Rovida étrend-kiegészítő kapszula 30x

3 990 Ft

Rovida étrend-kiegészítő kapszula 30x

Name: Rovida étrend-kiegészítő kapszula 30x
Brand: Herba-D
Price: 3990 HUF
Availability: InStock
Rating: 5 (1 reviews)

5 (1 vélemény)

Érdekel mit mondanak róla mások?

Megnézem a véleményeket!

Legyél te is törzsvásárlónk!

Folyton fújod az orrod? Egész nap tüsszögsz? Eleged van belőle, hogy az emberek távolságot tartanak tőled, mert azt hiszik beteg vagy?

A Rovida a fekete kömény, a csalán levél, a quercetin és a bromelain erejével segít legyőzni az allergiás tüneteket! Ez a 4 gyógynövény segíthet megelőzni az allergiás tünetek kialakulását, vagy csökkentheti az ezzel járó tüneteket még a szezon kezdete előtt.

Bővebben

Vásárold meg most szuper áron Rovida étrend-kiegészítő kapszula 30x termékünket és válogass további termékeink közül a kedvezőbb árakért! Azonnal, valós magyarországi készletről szállítunk, ráadásul mindössze 9.990 forinttól ingyenesen! Ha most leadod rendelésed, akár még a mai napon átadjuk a futárszolgálatnak és 1 munkanapon belül meg is kaphatod!

Várható szállítási idő

2023.09.27

Kiszerelés

30 db

Származási hely

Magyarország

Ingyenes szállítás

10.499 Ft feletti rendelés esetén

További adatok

Raktáron

Változat

Szimpla csomag

Trió csomag - 6% kedvezmény + ingyen szállítás

3 990 Ft

60 napos pénzvisszafizetési garanciát vállalunk, ha a termékünk nem válik be.

Csak természetes hatóanyagokat használunk, hozzáadott adalékanyagok nélkül. Nézd meg itt a termék összetevőit.

Pontosan annyi hatóanyagot tartalmaz, amennyire a szervezetednek szüksége van.

Magyar tulajdon, magyar fejlesztés és magyar gyártás, minden hatósági engedéllyel rendelkezünk.

Törzsvásárlóként egyre nagyobb kedvezménnyel vásárolhatsz.

Rovida étrend-kiegészítő kapszula 30x leírása

4 gondosan válogatott gyógynövény egyedi ötvözete

Fekete kömény

A fekete kömény magját már több mint 4500 éve használja az emberiség. Az ókori gyógyításban is nagy szerepet kapott a görögöknél és az egyiptomiaknál is, akik a fáraók aranyának is nevezték. A növény a mákhoz hasonló tokokat képez, ezekben fejlődnek a különleges fűszeres illatú és ízű fekete magok. Az évezredek során beigazolódott sokoldalúsága. A sokak életét megkeserítő pollen- és porallergia ellen ajánlott különböző készítmények a már kialakult tünetekre nyújtanak enyhülést.

Mennyivel egyszerűbb lenne, ha ki sem alakulnának ezek a kellemetlen tünetek. Ennek eléréséhez, már az allergiaszezon kezdete előtt érdemes hozzálátni a megelőzéshez. A feketekömény magja csökkenti az asztmás rohamok számát és enyhíti azok lefolyását. Fél- egyéves kúrával akár minimálisra is csökkenthetők e kellemetlen betegség tünetei.

Azoknak is érdemes kipróbálni, akiknek csak reggelente jelentkeznek asztmatikus jellegű panaszai. A feketeköménymag csökkentheti a szénanátha, a pollen-, a por-, az állatszőr-, sőt, még az ételallergia tüneteit is! Gyulladáscsökkentő hatása, valamint erős vírus- és baktériumölő tulajdonsága révén, megfázás és a tüdőgyulladás kiegészítő kezeléseként javasolják alkalmazását.
A feketeköményből eddig legalább 100 féle értékes hatóanyagot mutattak ki. A feketeköményt vízhajtó szerként és puffadásgátlóként is alkalmazzák.

Csalánlevél

A csalán ősidők óta ismert, sokoldalúan alkalmazott gyógynövény, amely számtalan gyógyhatással rendelkezik. Vértisztító hatásának köszönhetően enyhítheti az allergiás tüneteket, így az ekcémát, szénanáthát, asztmát és a csalánkiütést. A csalán természetes gyulladáscsökkentő, emellett pedig antihisztaminokat is tartalmaz, enyhítheti a szénanáthával összefüggő tüneteket, például az orrdugulást, köhögést, tüsszögést, szem- és orrviszketést.

Quercetin

A Quercetin, egy nélkülözhetetlen flavonoid, amely sok más flavonoid alapanyaga így a citrus-, rutin-, heszperidin-, narigin- valamint a tangeritin flavonoidokét. A legaktívabb flavonoid, ugyanakkor a legtöbb gyógynövény a Quercetin tartalmának köszönhetően rendelkezik gyógyhatással.

A Quercetin erős gyulladásgátló tulajdonságokkal rendelkezik, hiszen meggátolja a gyulladás kialakulását. Meggátolja a hisztamin, valamint más gyulladásért felelős anyagok termelését. A hisztamin az egyik fő oka az olyan allergiás tünetek kialakulásának, mint a csöpögő, eldugult orr, a vizenyős szemek, a csalánkiütés, valamint a megduzzadt lágyszövetek, pl. az arc és az ajkak esetében, megakadályozhatja az anafilaxiás reakciókat allergiás személyeknél.

Ugyanakkor a Quercetin antioxidáns és védi a szervezetben felgyülemlett C vitamint is. Antioxidánsként is funkcionál, kisöpörve szervezetünkből a káros szabadgyököket. A Bromelain úgyszintén egy erős gyulladáscsökkentő. A Bromelain és a Quercetin egy nagyon hatékony szinergisztikus együttest eredményez.

Bromelain

Az ananászban magas koncentrációban jelen lévő bromelain egy olyan enzim, amely nem csupán a fehérjék emésztését segíti, hanem ígéretes gyulladáscsökkentő hatásai is vannak A bromelin gátolja egyes prosztaglandinok kialakulását. Ezáltal megakadályozza az ezek okozta fájdalmat és gyulladást, miközben egyéb, gyulladásgátló prosztaglandinok termelését elősegíti. Oldja a nyákot, enyhíti az orrdugulást. Habár a vizsgálati eredmények nem egységesek, a bromelin enyhítheti a szénanátha következtében fellépő gyulladást és duzzanatot is.

60 napos pénzvisszafizetési garancia

Mi a Herba-D-nél, a legtisztább alapanyagokat használjuk termékeinkhez és minden technológiát bevetünk, hogy a legmagasabb hatóanyagot préseljük bele a készítményeinkbe. Magyar vállalkozás vagyunk és tiszta szívvel állunk fogyasztóink szolgálatára. Éppen ezért termékeinkre 60 napos pénz visszafizetési garanciát vállalunk! Ha az utasításokat betartva két hónap elteltével sem érzékelsz változást az állapotodban, a termék árát szó nélkül visszatérítjük.

Adatok

Márka

Herba-D

OGYÉI notifikációs szám

23971/2020

Adag

30 adag

Tárolás

Szobahőmérsékleten, napfénytől védve, gyermekek elől elzárva tárolandó.

Forgalmazó

Deko-Impex Kft.

Tömeg

38 g/db

Elégedettségi garancia

60 napos pénzvisszafizetési garancia minden termékre!

Ingyenes szállítás

Minden 10.490 Ft feletti rendelés esetén!

Összetevők, hatóanyagok és adagolás

1 napi adag (1 kapszula) Rvoida hatóanyaga (mg)

Fekete kömény kivonat	200
Quercetin (Japánakác virág kivonatból)	71
Japánakác virág kivonatból
Csalán levél kivonat	40
Ananász kivonat (Bromelain 1000 GDU/g enzim aktivitás)	25

A gyógynövény kivonatát és nem annak szárított őrleményét tartalmazza. Egy kapszulában lévő növényi kivonat megfelel 11.000 mg száraz növényi őrleménynek.

Felhasználási javaslat: Vegyél be naponta 1-2 kapszulát étkezés közben. Rágás nélkül folyadékkal egészben nyeld le.

A kivonat vagy extraktum a szárított növényi őrleménnyel szemben speciális technológiával készül, aminek köszönhetően töményebb formában, ezért jóval nagyobb mennyiségben tartalmazza az adott növény aktív hatóanyagait. Egy ilyen növényi kivonat vagy extraktum akár százszor is erősebb lehet a növényi pornál.

Természetes: Mert kizárólag természetes anyagokból készül.

Tiszta: Mert nem tartalmaz tartósítósítószert, és mesterséges adalék anyagokat.

Hatóanyagok: Mert a hatóanyagokat és összetevőket olyan formában és arányban tartalmazza, ahogyan a természetes élelmiszereinkben is megtalálhatóak azért, hogy azok a legmagasabb arányban hasznosuljanak a szervezetünkben.

Összetevők (1 kapszulában): Fekete kömény kivonat, HPMC (kapszula anyaga), japánakác virág kivonat, csalán levél kivonat, ananász kivonat.

Tudományos referenciák és klinikai vizsgálatok

Al-Muhsen S, Johnson JR, Hamid Q. Remodeling in asthma. J Allergy Clin Immunol 128: 451–464, 2011 [PubMed] [Google Scholar]

Ammit AJ, Bekir SS, Johnson PR, Hughes JM, Armour CL, Black JL. Mast cell numbers are increased in the smooth muscle of human sensitized isolated bronchi. Am J Respir Crit Care Med 155: 1123–1129, 1997 [PubMed] [Google Scholar]

An SS, Bai TR, Bates JH, Black JL, Brown RH, Brusasco V, Chitano P, Deng L, Dowell M, Eidelman DH, Fabry B, Fairbank NJ, Ford LE, Fredberg JJ, Gerthoffer WT, Gilbert SH, Gosens R, Gunst SJ, Halayko AJ, Ingram RH, Irvin CG, James AL, Janssen LJ, King GG, Knight DA, Lauzon AM, Lakser OJ, Ludwig MS, Lutchen KR, Maksym GN, Martin JG, Mauad T, McParland BE, Mijailovich SM, Mitchell HW, Mitchell RW, Mitzner W, Murphy TM, Pare PD, Pellegrino R, Sanderson MJ, Schellenberg RR, Seow CY, Silveira PS, Smith PG, Solway J, Stephens NL, Sterk PJ, Stewart AG, Tang DD, Tepper RS, Tran T, Wang L. Airway smooth muscle dynamics: a common pathway of airway obstruction in asthma. Eur Respir J 29: 834–860, 2007 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Anderson SD. How does exercise cause asthma attacks? Curr Opin Allergy Clin Immunol 6: 37–42, 2006 [PubMed] [Google Scholar]

Barnes PJ. Biochemical basis of asthma therapy. J Biol Chem 286: 32899–32905, 2011 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Benayoun L, Druilhe A, Dombret MC, Aubier M, Pretolani M. Airway structural alterations selectively associated with severe asthma. Am J Respir Crit Care Med 167: 1360–1368, 2003 [PubMed] [Google Scholar]

Berger P, Girodet PO, Begueret H, Ousova O, Perng DW, Marthan R, Walls AF, Tunon de Lara JM. Tryptase-stimulated human airway smooth muscle cells induce cytokine synthesis and mast cell chemotaxis. FASEB J 17: 2139–2141, 2003 [PubMed] [Google Scholar]

Berger P, Girodet PO, Manuel Tunon-de-Lara J. Mast cell myositis: a new feature of allergic asthma? Allergy 60: 1238–1240, 2005 [PubMed] [Google Scholar]

Berry M, Morgan A, Shaw DE, Parker D, Green R, Brightling C, Bradding P, Wardlaw AJ, Pavord ID. Pathological features and inhaled corticosteroid response of eosinophilic and non-eosinophilic asthma. Thorax 62: 1043–1049, 2007 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Bosse Y, Chin LY, Pare PD, Seow CY. Chronic activation in shortened airway smooth muscle: a synergistic combination underlying airway hyperresponsiveness? Am J Respir Cell Mol Biol 42: 341–348, 2010 [PubMed] [Google Scholar]

Brannan JD. Bronchial hyperresponsiveness in the assessment of asthma control: airway hyperresponsiveness in asthma: its measurement and clinical significance. Chest 138: 11S–17S, 2010 [PubMed] [Google Scholar]

Broide DH, Gleich GJ, Cuomo AJ, Coburn DA, Federman EC, Schwartz LB, Wasserman SI. Evidence of ongoing mast cell and eosinophil degranulation in symptomatic asthma airway. J Allergy Clin Immunol 88: 637–648, 1991 [PubMed] [Google Scholar]

Buels KS, Fryer AD. Muscarinic receptor antagonists: effects on pulmonary function. Hand Exp Pharmacol 208: 317–341, 2012 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Bumbacea D, Campbell D, Nguyen L, Carr D, Barnes PJ, Robinson D, Chung KF. Parameters associated with persistent airflow obstruction in chronic severe asthma. Eur Respir J 24: 122–128, 2004 [PubMed] [Google Scholar]

Busk M, Busk N, Puntenney P, Hutchins J, Yu Z, Gunst SJ, Tepper RS. Use of continuous positive airway pressure reduces airway reactivity in adults with asthma. Eur Respir J 41: 317–322, 2013 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Busse WW, Israel E, Nelson HS, Baker JW, Charous BL, Young DY, Vexler V, Shames RS. Daclizumab improves asthma control in patients with moderate to severe persistent asthma: a randomized, controlled trial. Am J Respir Crit Care Med 178: 1002–1008, 2008 [PubMed] [Google Scholar]

Canning BJ. Reflex regulation of airway smooth muscle tone. J Appl Physiol 101: 971–985, 2006 [PubMed] [Google Scholar]

Castro M, Rubin AS, Laviolette M, Fiterman J, De Andrade Lima M, Shah PL, Fiss E, Olivenstein R, Thomson NC, Niven RM, Pavord ID, Simoff M, Duhamel DR, McEvoy C, Barbers R, Ten Hacken NH, Wechsler ME, Holmes M, Phillips MJ, Erzurum S, Lunn W, Israel E, Jarjour N, Kraft M, Shargill NS, Quiring J, Berry SM, Cox G. Effectiveness and safety of bronchial thermoplasty in the treatment of severe asthma: a multicenter, randomized, double-blind, sham-controlled clinical trial. Am J Respir Crit Care Med 181: 116–124, 2010 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Chiba Y, Matsusue K, Misawa M. RhoA, a possible target for treatment of airway hyperresponsiveness in bronchial asthma. J Pharm Sci 114: 239–247, 2010 [PubMed] [Google Scholar]

Chiba Y, Takada Y, Miyamoto S, MitsuiSaito M, Karaki H, Misawa M. Augmented acetylcholine-induced, Rho-mediated Ca²⁺sensitization of bronchial smooth muscle contraction in antigen-induced airway hyperresponsive rats. Br J Pharmacol 127: 597–600, 1999 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Chiba Y, Ueno A, Shinozaki K, Takeyama H, Nakazawa S, Sakai H, Misawa M. Involvement of RhoA-mediated Ca²⁺sensitization in antigen-induced bronchial smooth muscle hyperresponsiveness in mice. Respir Res 6: 4, 2005 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Cho JY, Miller M, Baek KJ, Han JW, Nayar J, Lee SY, McElwain K, McElwain S, Friedman S, Broide DH. Inhibition of airway remodeling in IL-5-deficient mice. J Clin Invest 113: 551–560, 2004 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Chung KF, Patel HJ, Fadlon EJ, Rousell J, Haddad EB, Jose PJ, Mitchell J, Belvisi M. Induction of eotaxin expression and release from human airway smooth muscle cells by IL-1beta and TNFalpha: effects of IL-10 and corticosteroids. Br J Pharmacol 127: 1145–1150, 1999 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Cohen P, Rajah R, Rosenbloom J, Herrick DJ. IGFBP-3 mediates TGF-beta1-induced cell growth in human airway smooth muscle cells. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol 278: L545–L551, 2000 [PubMed] [Google Scholar]

Corren J, Lemanske RF, Hanania NA, Korenblat PE, Parsey MV, Arron JR, Harris JM, Scheerens H, Wu LC, Su Z, Mosesova S, Eisner MD, Bohen SP, Matthews JG. Lebrikizumab treatment in adults with asthma. N Engl J Med 365: 1088–1098, 2011 [PubMed] [Google Scholar]

Costello RW, Evans CM, Yost BL, Belmonte KE, Gleich GJ, Jacoby DB, Fryer AD. Antigen-induced hyperreactivity to histamine: role of the vagus nerves and eosinophils. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol 276: L709–L714, 1999 [PubMed] [Google Scholar]

Coutts A, Chen G, Stephens N, Hirst S, Douglas D, Eichholtz T, Khalil N. Release of biologically active TGF-beta from airway smooth muscle cells induces autocrine synthesis of collagen. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol 280: L999–L1008, 2001 [PubMed] [Google Scholar]

Damera G, Tliba O, Panettieri RA., Jr Airway smooth muscle as an immunomodulatory cell. Pulm Pharmacol Ther 22: 353–359, 2009 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Danek CJ, Lombard CM, Dungworth DL, Cox PG, Miller JD, Biggs MJ, Keast TM, Loomas BE, Wizeman WJ, Hogg JC, Leff AR. Reduction in airway hyperresponsiveness to methacholine by the application of RF energy in dogs. J Appl Physiol 97: 1946–1953, 2004 [PubMed] [Google Scholar]

Deng H, Hershenson MB, Lei J, Bitar KN, Fingar DC, Solway J, Bentley JK. p70 Ribosomal S6 kinase is required for airway smooth muscle cell size enlargement but not increased contractile protein expression. Am J Respir Cell Mol Biol 42: 744–752, 2010 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Dillon PF, Root-Bernstein R, Robinson NE, Abraham WM, Berney C. Receptor-mediated enhancement of beta adrenergic drug activity by ascorbate in vitro and in vivo. PLos One 5: e15130, 2010 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Dowell ML, Lakser OJ, Gerthoffer WT, Fredberg JJ, Stelmack GL, Halayko AJ, Solway J, Mitchell RW. Latrunculin B increases force fluctuation-induced relengthening of ACh-contracted, isotonically shortened canine tracheal smooth muscle. J Appl Physiol 98: 489–497, 2005 [PubMed] [Google Scholar]
Dowell ML, Lavoie TL, Lakser OJ, Dulin NO, Fredberg JJ, Gerthoffer WT, Seow CY, Mitchell RW, Solway J. MEK modulates force-fluctuation-induced relengthening of canine tracheal smooth muscle. Eur Respir J 36: 630–637, 2010 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Duan QL, Du R, Lasky-Su J, Klanderman BJ, Partch AB, Peters SP, Irvin CG, Hanrahan JP, Lima JJ, Blake KV, Liggett SB, Litonjua AA, Tantisira KG. A polymorphism in the thyroid hormone receptor gene is associated with bronchodilator response in asthmatics. Pharmacogenomics J. 2012. January 3 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Duvernelle C, Freund V, Frossard N. Transforming growth factor-beta and its role in asthma. Pulm Pharmacol Ther 16: 181–196, 2003 [PubMed] [Google Scholar]
Dyrda P, Tazzeo T, DoHarris L, Nilius B, Roman HN, Lauzon AM, Aziz T, Lukic D, Janssen LJ. Acute response of airway muscle to extreme temperature includes disruption of actin-myosin interaction. Am J Respir Cell Mol Biol 44: 213–221, 2011 [PubMed] [Google Scholar]
Ebina M, Takahashi T, Chiba T, Motomiya M. Cellular hypertrophy and hyperplasia of airway smooth muscles underlying bronchial asthma. A 3-D morphometric study. Am Rev Respir Dis 148: 720–726, 1993 [PubMed] [Google Scholar]
Flores C, Ma SF, Maresso K, Ober C, Garcia JG. A variant of the myosin light chain kinase gene is associated with severe asthma in African Americans. Genet Epidemiol 31: 296–305, 2007 [PubMed] [Google Scholar]
Foster PS, Hogan SP, Ramsay AJ, Matthaei KI, Young IG. Interleukin 5 deficiency abolishes eosinophilia, airways hyperreactivity, and lung damage in a mouse asthma model. J Exp Med 183: 195–201, 1996 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Fredberg JJ, Inouye D, Miller B, Nathan M, Jafari S, Raboudi SH, Butler JP, Shore SA. Airway smooth muscle, tidal stretches, and dynamically determined contractile states. Am J Respir Crit Care Med 156: 1752–1759, 1997 [PubMed] [Google Scholar]
Fredberg JJ, Inouye DS, Mijailovich SM, Butler JP. Perturbed equilibrium of myosin binding in airway smooth muscle and its implications in bronchospasm. Am J Respir Crit Care Med 159: 959–967, 1999 [PubMed] [Google Scholar]
Fu WP, Zhao ZH, Zhong L, Sun C, Fang LZ, Liu L, Zhang JQ, Wang L, Shu JK, Wang XM, Dai LM. Relationship between polymorphisms in the 5′ leader cistron, positions 16 and 27 of the adrenergic beta2 receptor gene and asthma in a Han population from southwest China. Respirology 16: 1221–1227, 2011 [PubMed] [Google Scholar]
Ghaffar O, Hamid Q, Renzi PM, Allakhverdi Z, Molet S, Hogg JC, Shore SA, Luster AD, Lamkhioued B. Constitutive and cytokine-stimulated expression of eotaxin by human airway smooth muscle cells. Am J Respir Crit Care Med 159: 1933–1942, 1999 [PubMed] [Google Scholar]
Gilbert IA, McFadden ER., Jr Airway cooling and rewarming. The second reaction sequence in exercise-induced asthma. J Clin Invest 90: 699–704, 1992 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Girodet PO, Ozier A, Trian T, Begueret H, Ousova O, Vernejoux JM, Chanez P, Marthan R, Berger P, Tunon de Lara JM. Mast cell adhesion to bronchial smooth muscle in asthma specifically depends on CD51 and CD44 variant 6. Allergy 65: 1004–1012, 2010 [PubMed] [Google Scholar]
Grainge CL, Lau LC, Ward JA, Dulay V, Lahiff G, Wilson S, Holgate S, Davies DE, Howarth PH. Effect of bronchoconstriction on airway remodeling in asthma. N Engl J Med 364: 2006–2015, 2011 [PubMed] [Google Scholar]
Green SA, Turki J, Bejarano P, Hall IP, Liggett SB. Influence of beta 2-adrenergic receptor genotypes on signal transduction in human airway smooth muscle cells. Am J Respir Cell Mol Biol 13: 25–33, 1995 [PubMed] [Google Scholar]
Grunig G, Warnock M, Wakil AE, Venkayya R, Brombacher F, Rennick DM, Sheppard D, Mohrs M, Donaldson DD, Locksley RM, Corry DB. Requirement for IL-13 independently of IL-4 in experimental asthma. Science 282: 2261–2263, 1998 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Gunst SJ, Wu MF. Selected contribution: plasticity of airway smooth muscle stiffness and extensibility: role of length-adaptive mechanisms. J Appl Physiol 90: 741–749, 2001 [PubMed] [Google Scholar]
Hadcock JR, Malbon CC. Down-regulation of beta-adrenergic receptors: agonist-induced reduction in receptor mRNA levels. Proc Natl Acad Sci USA 85: 5021–5025, 1988 [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Hakonarson H, Grunstein MM. Regulation of second messengers associated with airway s

Vélemények

Átlagos értékelés:

5 (1 vélemény)

(1)

(0)

Még nem írtál véleményt a termékről?

Véleményt írok!

L. Elvira

2021.11.01

Először szkeptikus voltam, mert rengeteg csalódás ért az eddigi allergia elleni küzdelemben, csak a férjem unszolására vágtam bele végső elkeseredésemben, de nagyon kellemeset csalódtam! Harmadik hónapja használom és mintha elvágták volna és nem lettem volna allergiás soha! Mindenkinek ajánlom, aki hasonló cipőben jár, mint én!

Jogi nyilatkozat

A Herba-D termékcsalád egészségmegőrzést támogató étrend-kiegészítői nem gyógyszerek, hanem olyan a hagyományos étrend kiegészítésére szolgáló élelmiszerek, amelyek koncentráltan tartalmazzák a tápanyagokat és egyéb táplálkozási vagy élettani hatással rendelkező anyagokat, egyenként vagy kombináltan. A 37/2004 (IV. 26.) EU-s rendeletben foglaltak szerint az étrend-kiegészítők nem alkalmasak betegségek és a szervezet működési zavarainak gyógyítására, kezelésére, megelőzésére. Fogyasztásuk nem helyettesíti a megfelelő szakorvosi diagnózist és a gyógyszeres kezelést. A Deko-Impex Kft, mint a Herba-D termékcsalád tulajdonosa valamennyi kommunikációs felületén tiszteletben tartja a fenti rendeletben foglaltakat, valamint a Gazdasági Versenyhivatal előírásait. Termékeink hatóanyagairól megosztott írásaink a legújabb, szakirodalmi források áttanulmányozása nyomán születnek, kizárólag olvasóink általános, magas szintű ismeretterjesztését kívánják szolgálni az összetevőkkel kapcsolatban. Az információk nem értelmezhetők orvosi tanácsként személyes problémákra, és nem kívánnak javaslatok lenni konkrét tünetek kezelésére. Ezek a szövegek nem eladásösztönző célból készülnek és nem ösztönöznek a termékeink megvásárlására és nem értelmezhetőek orvosi tanácsként, nem kívánnak javaslatok lenni konkrét tünetek kezelésére. Ha vásárlóink ismételt vásárlásaikkal megtisztelnek bennünket, az csakis azért történjék, mert a Herba-D termékek jótékony hatásait maguk tapasztalták. Ezért teszünk meg mindent nap mint nap.